一种好的固定液，应具有以下特性：①渗透力强，能迅速渗人组织内部；②不会使组织过度收缩或膨胀；③ 能硬化、固化组织，使细胞成分的形态和位置与生活状态时相似；④使组织对染料产生较强的亲和力，并产生较佳的折光率。固定液可分单纯固定液和混合固定液两类。

    1.单纯固定液   是指由一种化学物质组成的固定液。此类固定液包括：甲醛、乙醇、乙酸、重铬酸钾、苦味酸、丙酮、氯化汞、铬酸、锇酸等，常用的如下。

（1）甲醛（福尔马林）：为一种可溶于水的无色气体，极易挥发，有强烈的刺激性气味，市售为37%~40%甲醛水溶液，用于固定的甲醛溶液浓度为4%，是 40%甲醛溶液和水按1：9比例配制而成。甲醛是一种还原剂，易被氧化成甲酸，故不能和锇酸、重铬酸钾及铬酸等氧化剂混合。甲醛渗透力强，组织收缩小，能较好硬化组织。甲醛溶液能固定蛋白质，但不使白蛋白、核蛋白沉淀。甲醛溶液是脂肪、类脂和神经组织最佳固定液，也可用于固定线粒体、高尔基复合体，甲醛溶液还是糖的保护剂。甲醛溶液固定的组织细胞核着色良好，但固定时间较长时因酸化作用而使细胞核着色欠佳，含血较多的组织可形成黑色或黑褐色的色素，即甲醛色素。

（2）乙醇：为无色液体，可与水以任何比例混溶。乙醇是一种还原剂，易被氧化成乙醛，再变为醋酸，故不能与铬酸、重铬酸钾、锇酸等氧化剂混合。用于固定的浓度以80%~95%最好。乙醇具有固定、硬化、脱水作用。乙醇的渗透力较弱，固定速度较慢，用其固定的标本取材要薄。乙醇对糖原、纤维蛋白和弹性蛋白有良好的固定效果。被乙醇沉淀的核蛋白仍能溶于水，使核着色不良，故乙醇不宜用于染色体的固定。高浓度乙醇硬化作用强，组织变脆、收缩严重，导致组织固定不均，故不宜单独使用或留置组织过久。用70%~80%乙醇可较久地留置组织，或先用80%乙醇固定数小时，再移入95%乙醇固定，这样可避免组织过度收缩、变硬。50%以上的乙醇可溶解脂肪及类脂质，若需保留这些物质，不能用乙醇作为固定液。

（3）乙酸（醋酸、冰醋酸）：是具有刺激气味的无色液体，可与水、乙醇以各种比例混溶，用于固定的派度为0.3%~5％。醋酸穿透力强，染色质固定快，一般大小的组织只需圖定30～60分钟即可，但可使组织膨胀，一般不单独使用，常与乙醇配制成混合固定液，以抵消乙醇所致的组织收缩和硬化。醋酸可抑制细菌和酸的活性，防止自溶。对糖、脂肪、类脂无固定（保存）作用，但可使核蛋白沉淀，细胞核显示清晰，是染色体最佳固定液。用醋酸固定的组织不必水洗，可直接移人50％或70％乙醇中。

2. 混合固定液   是指由多种化学物质混合组成的固定液。实际工作中多使用混合固定液，其固定效果明显优于单纯固定液。

中性甲醛液：具有渗透力强、组织收缩小、染色效果好的特点。可用作常规固定液或标本保存液，脂肪染色常用此液固定。中性甲醛液还能保存大多数抗原物质，提高免疫组化检测的阳性率，因此，是免疫组化最常用的固定液。固定时间一般为6~24小时。此液中甲醛的浓度力6%~8%。混合固定液有多种，目前我科经过多种试剂对比选用中性甲醛液。